产品货号:
GS0109
中文名称:
磁珠法质粒DNA小量提取试剂盒(96孔)
英文名称:
Mag-BB 96 Well Plasmid DNA Mini-Preps Kit
产品规格:
2×96T|10×96T
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本试剂盒是一次性可同时处理96个不同样品的质粒小量抽提试剂盒。本试剂盒将磁性纳米分离技术和细菌细胞的SDS碱裂解法结合从菌体中提取高质量的质粒DNA。在离心力的作用下细胞碎片和SDS复合物沉淀下来。在一定的条件下磁珠能很好的吸附上清中的质粒DNA,其他杂质如蛋白质、盐离子等通过洗涤被除去。当条件改变时,磁珠释放吸附的质粒DNA。对于高拷贝质粒,从2mL过夜培养的菌液(OD600=2.0)中可以获得超过15μg的质粒DNA。
本试剂盒抽提得到的质粒纯度高,OD260/OD280比值一般为1.8~1.9之间,OD260/OD230比值大于2.0,可直接用于转化、DNA测序、PCR和酶切等后续实验。
- 操作快速简单,60min之内可完成96个不同样品的提取。
- 无需离心,实现质粒提取的高通量化和自动化。
- 抽提得到的质粒浓度高、纯度好,可直接用于后续实验。
组分 | 2×96T | 10×96T |
Buffer P1 | 60mL | 280mL |
Buffer P2 | 60mL | 280mL |
Buffer P3 | 80mL | 400mL |
SgMag Beads | 5mL | 25mL |
TE Buffer(pH8.0) | 20mL | 100mL |
RNase A | 0.8mL | 4mL |
Deep Well Collection Plate | 4 | 20 |
96 Well Storage Plate | 2 | 10 |
Sealing Film | 4 | 20 |
保存:室温
- 加入RNase A的Buffer P1请存放于2~8℃。
- Buffer P3中含有刺激性的化合物,操作过程中应穿上实验服,戴好乳胶手套,避免沾染皮肤、眼睛和衣服,防止吸入口鼻。沾染皮肤或眼睛后,请立即用清水或生理盐水冲洗,必要时寻求医生的帮助。
自备材料:磁分离板、适用Deep Well Collection Plate的离心机和70%乙醇。
试剂盒初次开启,将RNase A溶液全部加入Buffer P1中,充分混匀后在瓶身做好标记。储存于2~8℃,有效期6个月。
每次使用前请检查Buffer P2是否出现沉淀,如有沉淀,请于37℃溶解沉淀,待冷却至室温后使用。
- 在含合适抗生素的培养基中接种目标菌株,于37℃摇床充分振荡培养12-16h。
- 菌液状态对质粒DNA得率非常关键,请用不超过容器容量1/4体积的培养基进行培养。
- 处于生长平台期的菌体用于质粒抽提得率最高,过度培养可能导致DNA降解。
- 菌液状态对质粒DNA得率非常关键,请用不超过容器容量1/4体积的培养基进行培养。
- 对于高拷贝质粒,取2mL菌液分别加入Deep Well Collection Plate中,室温4000rpm离心2min收集菌体,吸净上清。
- 对于高拷贝质粒,从2mL过夜培养菌液中通常可以获得超过15μg质粒DNA,不推荐使用更大的菌液量。
- 对于低拷贝质粒,如果使用更多的菌液,则同一个样品分多管收集,每管不超过5mL,分别裂解,然后用同一批SgMag Beads吸附质粒DNA获得更高的得率。
- 对于高拷贝质粒,从2mL过夜培养菌液中通常可以获得超过15μg质粒DNA,不推荐使用更大的菌液量。
- 向菌体沉淀中加入250μL Buffer P1,吸打至彻底悬浮菌体。
- Buffer P1首次使用时请检查是否已加入RNase A。
- 请彻底悬浮菌体,否则影响得率和质量。
- Buffer P1首次使用时请检查是否已加入RNase A。
- 加入250μL Buffer P2,用新的Sealing Film封口后立即温和颠倒Deep Well Collection Plate 5~10次,室温静置2~4min至完全裂解。
- 裂解时间与菌量相关,菌量多则适当延长时间,最长不能超过5min。
- 混匀时,动作要温和,如果剧烈震荡,可能把基因组DNA打断混杂在质粒中。
- 混匀后应短暂低速离心后再将Sealing Film取下,避免样品间交叉污染。
- 裂解时间与菌量相关,菌量多则适当延长时间,最长不能超过5min。
- 加入350μL Buffer P3,用Sealing Film封口后立即温和颠倒Deep Well Collection Plate 5~10次,充分混匀。
- 如果起始菌液较多,混匀后室温静置2min以彻底去除RNA。
- 于离心机最大转速离心20min,将上清全部小心移入新的Deep Well Collection Plate,然后向上清液中加入25μL SgMag Beads,温和吸打混匀,室温结合3min,间或混匀。
- 加SgMag Beads之前,请将其充分混匀。
- 请务必将SgMag Beads加至液面以下。
- 加SgMag Beads之前,请将其充分混匀。
- 将Deep Well Collection Plate置于磁分离板上1~2min,待SgMag Beads完全吸至孔壁上,吸弃上清,然后从磁分离板上取出Deep Well Collection Plate。
- 吸弃上清前,若孔口粘有少量SgMag Beads,请用上清液将其洗至孔内,以确保所有SgMag Beads吸附至孔壁上。
- 吸弃上清时,请勿吸入SgMag Beads,尽量吸净上清。
- 从磁分离板上取出Deep Well Collection Plate后,若有少量上清,请将其置于磁分离上,再次吸取上清。
- 吸弃上清前,若孔口粘有少量SgMag Beads,请用上清液将其洗至孔内,以确保所有SgMag Beads吸附至孔壁上。
- 向Deep Well Collection Plate中加入900μL 70%乙醇,吸打混匀,将Deep Well Collection Plate置于磁分离板上1min,待SgMag Beads完全吸至孔壁上之后,吸弃上清,从磁分离板上取出Deep Well Collection Plate。
- 吸弃上清前,若孔口粘有少量SgMag Beads,请用上清液将其洗至孔内,以确保所有SgMag Beads吸附至孔壁上。
- 吸上清时,请勿吸入SgMag Beads,尽量吸净上清。
- 吸弃上清前,若孔口粘有少量SgMag Beads,请用上清液将其洗至孔内,以确保所有SgMag Beads吸附至孔壁上。
- 重复步骤8一次,室温干燥15~20min或者55℃恒温箱中干燥5~7min至孔内无液体残留。
- 干燥前,请尽量将管内液体吸干。
- 干燥前,若出现液体挂壁现象,可将Deep Well Collection Plate短暂离心之后,再将其置于磁分离板上,待所有SgMag Beads完全吸至孔壁之后再吸净孔内液体。
- 干燥前,请尽量将管内液体吸干。
- 加入50~100μL的TE Buffer(pH8.0),使SgMag Beads充分悬浮在TE buffer中,室温洗脱3~5min,间或混匀。
- 请将孔壁上所有SgMag Beads充分悬浮在TE Buffer中
- 根据实验需要可以将TE Buffer(pH8.0)用无菌的双蒸水(pH>7.5)代替。
- 请将孔壁上所有SgMag Beads充分悬浮在TE Buffer中
- 将Deep Well Collection Plate置于磁分离板上1min,待SgMag Beads完全吸至孔壁上,吸取上清至96 Well Storage Plate,即获得纯的质粒DNA。
- 吸取上清前,请确保所有SgMag Beads完全吸至孔壁,请勿吸入SgMag Beads,否则影响产物纯度。
- 未提取出质粒或质粒得率较低
- 菌株老化。请涂布平板培养后,重新挑选单菌落进行液体培养。
- 质粒拷贝数低。由于使用低拷贝数载体引起的质粒DNA提取量低,可以使用更多的菌量但需要相应增加溶液使用量。
- 菌体中无质粒。有些质粒本身不能在某些菌种中稳定存在,经多次转接后有可能造成质粒丢失。例如,柯斯质粒在大肠杆菌中长期保存不稳定,因此不要频繁转接,每次接种时应接种单菌落。另外,检查筛选用抗生素使用浓度是否正确。
- 碱裂解不充分。使用过多菌体培养液,会导致菌体裂解不充分,可减少菌体用量或增加Buffer P1,P2和P3的用量。
- 溶液使用不当。Buffer P2和P3在温度较低时可能出现沉淀,应置于37℃温浴直至沉淀溶解,待冷却至室温后使用。
- 洗脱液不合适。洗脱效率与洗脱液的pH值有关,如果使用水进行洗脱,请确保其pH> 7.5,如果pH过低可能导致洗脱量低,可以用1mol/L氢氧化钠溶液调节水的pH值。
- 溶液失效。Buffer P2长期暴露在空气中容易失效,请每次使用完后,立即盖紧瓶塞,以免失效,造成碱裂解不充分。
- 结合不充分。加入SgMag Beads之后,请将其充分混匀,并使SgMag Beads处于悬浮状态;结合时间为3~5min,间或混匀。
- 操作过程中丢失SgMag Beads。结合及洗涤过程中可能有少量的SgMag Beads粘在孔口上,吸弃上清前请用少量的上清液清洗孔口,使粘在孔口的SgMag Beads也吸附在孔壁上。
- 洗脱过程操作不当。洗脱时请将孔壁上所有SgMag Beads充分悬浮在TE Buffer中。
- 洗脱时间较短。请将SgMag Beads充分悬浮在TE buffer中,洗脱3~5min,间或混匀。
- 菌株老化。请涂布平板培养后,重新挑选单菌落进行液体培养。
- 质粒纯度不高
- 混有蛋白。请勿使用过多菌体。经Buffer P1,P2和P3处理,离心后溶液应为澄清,如果还混有微小蛋白悬浮物可再次离心,并延长离心时间,完全沉淀蛋白后再取上清。
- 混有RNA。RNase A处理不彻底,请减少菌体用量或加入Buffer P3后室温再延长放置时间5~10min。如果Buffer P1已保存6个月以上,请在Buffer P1中再添加终浓度为100μg/mL的RNase A。
- 混有基因组DNA。加入Buffer P2后应温和混匀,如果剧烈振荡,可能把基因组DNA打断从而混杂在质粒中。如果加入Buffer P2后过于粘稠,无法温和混匀,请减少菌体用量。细菌培养时间过长会导致细胞内DNA的降解,培养时间不要超过16h。
- 质粒的二聚体和多聚体形式。质粒复制过程中形成的,与宿主菌相关,电泳可检测出多条条带,单酶切处理后可变成单一条带。
- 乙醇有残留。请吸弃上清之后从磁分离板上取出Deep well Collection Plate,放置2min之后再将Deep well Collection Plate置于磁分离板上30 s,吸净管底的液体。若出现残液的挂壁现象,请短暂离心之后再将Deep well Collection Plate置于磁分离板上30 s,吸净孔内的液体。
- SgMag Beads洗涤不充分。向Deep well Collection Plate中加入70%乙醇以后,请充分混匀,使SgMag Beads充分悬浮在70%乙醇中。
- SgMag Beads没有完全干燥。请将SgMag Beads完全干燥,保证无乙醇残留。
- 最后一步吸取上清时吸入SgMag Beads。请确保所有SgMag Beads吸至孔壁上,再吸取上清。如果不小心吸入SgMag Beads,请将上清液放回原孔,待SgMag Beads完全吸至孔壁之后重新吸取上清。或者将吸取的上清DNA溶液10000rpm离心2min,再取上清。
- 混有蛋白。请勿使用过多菌体。经Buffer P1,P2和P3处理,离心后溶液应为澄清,如果还混有微小蛋白悬浮物可再次离心,并延长离心时间,完全沉淀蛋白后再取上清。
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